Плазма богатая тромбоцитами (PRP)

Плазма богатая тромбоцитами (PRP)

Curr Rev Musculoskelet Med DOI

10.1007/s12178-008-9032-5


Плазма богатая тромбоцитами (PRP)

· Стивен Сэмпсон

· Майкл Герхардта

· Берт Мандельбаум

Журнал Humana Press 2008


В Европе и Соединенных Штатах растет распространенность использования аутологичных продуктов крови в целях ускорения исцеление при различных травмах и повреждениях. Недавно стало известно больше о конкретных факторах роста, которые играют решающую роль в процессе исцеления. С приобретением этих знаний, проявляется энтузиазм в применении концентрированных тромбоцитов, которые выпускают феноменальный объем фактора роста, чтобы стимулировать восстановление незаживающих травм. За 20 лет применения аутологичной PRP, методика была безопасной и применение было задокументировано во многих областях, в том числе, ортопедии, спортивной медицине, стоматологии, оториноларингологии, нейрохирургии, офтальмологии, урологии, как ранозаживляющее средство, косметическое, кардиоторакальной и челюстно-лицевой хирургии. Эта статья знакомит читателя с PRP-терапией и обзорами текущей литературы по этой новой методики лечения. Как результат, PRP является перспективной альтернативой хирургии по продвижению безопасного и естественного исцеления. Однако, есть несколько контролируемых исследований и, в основном, эпизодические или отчеты о частных случаях. Кроме того, размеры выборки, часто небольшие и ограничивают обобщение результатов. В последнее время появляются издания, рассказывающие о благотворном влиянии PRP при хронических незаживающих повреждениях сухожилий, в том числе боковой эпикондилит и подошвенный фасциит и дегенерация хряща (Мишра и Павелко, Американский Жернал Спортивной Медицины 10 (10):1-5, 2006; Барретт и Эрредж, Лечение Заболеваний Стоп Сегодня 17:37-42, 2004). Однако, по мере увеличения клинического применения, увеличивается количество контролируемых исследований, необходимых для дальнейшего развития и понимания этой методики.

Введение

В Европе, а в последнее время и в Соединенных Штатах, положительный тренд создает спрос на использование аутологичных продуктов крови в стремлении облегчить исцеление при различных травмах и заболеваниях. В последние годы научные исследования и технологии предоставили новый взгляд на понимание процесса заживления ран. Изначально существовала версия, что тромбоциты необходимо исключительно для инициации процесса свертывания крови. Однако, мы выяснили, что тромбоциты выделяют множество биологически активных белков, ответственных за привлечение макрофагов, мезенхимальных стволовых клеток и остеобластов, которые не только способствует удалению некротических тканей, а также усиливают регенерацию и заживление тканей.
На основе этого принципа, тромбоциты представляются как стимуляторы супер-физиологического выброса факторов роста в попытке начать исцеление хронических травм. Современная литература свидетельствует о малочисленности разнообразных клинических испытаний. Существующая литература наполнена, в основном, отдельными сообщениями или сериями случаев, которые, как правило, имеют небольшие размеры выборки и несколько контрольных групп [1, 2]. Большие многоцентровые испытания в настоящее время обеспечивают более объективное понимание применения плазмы Platelet Rich Plasma (PRP) при хроническом эпикондилите.
По данным Всемирной организации здравоохранения – World Health Organization (WHO), травмы опорно-двигательной системы являются наиболее частой причиной тяжелой длительной болезненности и инвалидности, и затрагивает сотни миллионов людей по всему миру [3]. В самом деле, 2000-2010 годы были названы «декадой костей и суставов» в качестве глобальной инициативы для поощрения дальнейших исследований по профилактике, диагностике и лечению [3, 4].

Травмы мягких тканей, сухожилий и связок составляют 45% всех травм опорно-двигательного аппарата в США [4, 5]. Неизменная популярность спортивных мероприятий привела к «эпидемии» заболеваний опорно-двигательного аппарата, акцентировав внимание на сухожилия. Кроме того, современные методы визуализации, в том числе магнитно-резонансная томография и УЗИ опорно-двигательного аппарата предоставили медикам знания для последующего изучения этих травм.


Компоненты крови.


Кровь состоит из плазмы, красных кровяных телец (эритроцитов), белых кровяных телец (лейкоцитов) и тромбоцитов. Плазма - это жидкая составляющая крови, состоящая в основном из воды и выступающая в качестве транспортера для клеток. Плазма также содержит фибриноген - белок, который действует как сеть и «ловит» тромбоциты на пораженном месте в виде сгустка. Красные кровяные тельца помогают забрать кислород из легких и доставить его в другие клетки организма, в то же время удаляя углекислый газ. Лейкоциты (белые кровяные тельца) борются с инфекцией, фагоцитируют микроорганизмы. Тромбоциты отвечают за гемостаз, строительство новой соединительной ткани, и реваскуляризацию. Как правило, кровь содержит 93% эритроцитов, 6% тромбоцитов, и 1% лейкоцитов [6]. Преимущество PRP состоит в изменении процентного соотношения компонентов в крови - снижении эритроцитов до 5%, которые менее полезны в процессе заживления и регенерации, и повышении тромбоцитов до 94%, чтобы стимулировать восстановление [6].

Тромбоциты

Тромбоциты - это небольшие дисковидные клетки крови, создаваемые костным мозгом, с периодом жизни в 7-10 дней. Внутри тромбоцитов много внутриклеточных структур, содержащих гликоген, лизосомы и два типа гранул. Альфа-гранулы содержат факторы свертывания крови и факторы роста, которые, в конечном счете, и необходимы для запуска лечебного процесса. Как правило, в состоянии покоя, тромбоцитам требуется раздражитель для включения в процесс заживления раны и гемостаза [7]. После активации тромбина, тромбоциты принимают различные формы и развивают ответвления, называемые псевдоподии, которые распространяются через поврежденную ткань. Этот процесс называется агрегацией, то есть объединение отдельных тромбоцитов в единую систему. В конечном итоге, гранулы, содержащиеся в тромбоцитах, выпускают факторы роста, которые стимулируют воспалительный процесс и исцеление [7].

PRP


PRP (Platelet Rich Plasma) определяется как объем фракции плазмы аутологичной крови, обладающий концентрацией тромбоцитов выше базовых показателей [8, 9]. Нормальная концентрация тромбоцитов составляет 200 000 тромбоцитов/мл. Исследования показали, что клиническую эффективность можно ожидать с минимальным увеличением базового показателя в 4 раза (1 млн тромбоцитов/мл) [6]. В последнее время появилась возможность значительного изменения концентрации тромбоцитов, что напрямую зависит от используемого оборудования.

Использование аутологичной PRP впервые было зафиксировано в 1987 году доктором Феррари М[10] после операции на открытом сердце, когда было необходимо избежать переливания больших объемов крови. С этого времени применение аутологичной PRP было использовано и задокументировано во многих областях, в том числе в ортопедии, спортивной медицине, стоматологии, ЛОР, нейрохирургии, офтальмологии, урологии и при заживлении ран, а также в косметологии, кардиоторакальной и челюстно-лицевой хирургии. Исследования показывают, что PRP может положительно повлиять на уменьшение воспалительного процесса, восстановление послеоперационной потери крови, подавление инфекции и на заживление мягких тканей.
Помимо локального гемостаза на участках травмы, тромбоциты содержат в обилии факторы роста и цитокины, которые являются ключевыми в заживлении мягких тканей и минерализации костной ткани [4]. Повышение уровня информированности о тромбоцитах и их роли в процессе исцеления привело к концепции терапевтического применения.

Ссылки на источники

  1. Mishra A, Pavelko T. Treatment of chronic elbow tendinosis with buffered platelet-rich plasma. Am J Sports Med. 2006;10(10):1–5.

  2. Barrett S, Erredge S. Growth factors for chronic plantar fascitis. Podiatry Today. 2004;17:37–42.

  3. Woolf AD, Pfleyer B. Burdon of major musculoskeletal condi­tions. Bull World Health Organ. 2003;81:646–56.

  4. Anitua M, Sa´nchez E, Nurden A, Nurden P, Orive G, And´ıa I. New insights into and novel applications for platelet-rich fibrin therapies. Trends Biotechnol. 2006;24(5):227–34.

  5. Praemer AF. Musculoskeletal conditions in the United States. 2nd ed.Rosemont:AmericanAcademyofOrthopaedicSurgeons;1999.

  6. Marx R, Garg A. Dental and craniofacial applications of platelet-rich plasma. Carol Stream: Quintessence Publishing Co, Inc.; 2005.

  7. Everts P, Knape J, Weirich G, Schonberger J, Hoffman J, Overdevest E, et al. Platelet-rich plasma and platelet gel: a review. JECT. 2006;38:174–87.

  8. Pietrzak W, Eppley B. Scientific foundations platelet rich plasma: biology and new technology. J Craniofac Surg. 2005;16(6):1043– 54.

  9. Marx RE. Platelet-rich plasma (PRP): what is PRP and what is not PRP? Implant Dent. 2001;10:225–8.

  1. Ferrari M, Zia S, Valbonesi M. A new technique for hemodilu-tion, preparation of autologous platelet-rich plasma and intraoperative blood salvage in cardiac surgery. Int J Artif Organs. 1987;10:47–50.

  2. Antitua E, Andia I, Sanchez M, Azofra J, Del Mar Zalduendo M, De La Fuente M, et al. Autologous preparations rich in growth factors promote proliferation and induce VEGF and HGF pro­ductions by human tendon cells in culture. J Orthop Res. 2005;23:281–6.

  3. Fenwick SA, Hazlelman BL, Riley GP. The vasulature and its role in the damaged and healing tendon. Arthritis Res. 2002;4: 252–60.

  4. Hayem G. Tenology: a new frontier. Joint, Bone, Spine. Rev Rhum. 2001;68:19–25.

  5. Jobe F, Ciccotti M. Lateral and medial epicondylitis of the elbow. J Am Acad Orthop Surg. 1994;2:1–8.

  6. Edwards SG, Calandruccio JH. Autologous blood injections for refractory lateral epicondylitis. Am J Hand Surg. 2003;28(2): 272–8.

  7. Antiua E, Sanchez M, Nurden A, Zalduendo M, De La Fuente M, Prive G, et al. Autologous fibrin matrices: a potential source of biological mediators that modulate tendon cell activities. J Bio-med Mater Res Pt A. 2006;77(2):285–93.

  8. Kader D, Sakena A, Movin T, Magulli N. Achilles tendinopathy: some aspects of basic science and clinical management. Br J Sports Med. 2002;36:239–49.

  9. Smidt N, Assendelft W, Arola H, et al. Effectiveness of physio­therapy for lateral epicondylitis: a systemic review. Ann Med. 2003;35:51–62.

  10. Werner S, Grose R. Regulation of wound healing by growth factors and cytokines. Physiol Rev. 2003;83:835–70.

  11. Kirker-Head CA. Potential applications and delivery strategies for bone morphogenetic proteins. Adv Drug Deliv Rev. 2000;43:65–92.

  12. Froum SJ, Wallace S, Tarnow DP, Cho SC. Effect of platelet-rich plasma on bone growth and osseointegration in human maxillary sinus grafts: three bilateral case reports. Int J Periodontics Restorative Dent. 2002;22:45–53.

  13. Raghoebar GM, Schortinghuis J, Liem R, Ruben J, Van der Wal J, Vissink A. Does platelet-rich plasma promote remodeling of autologous bone grafts used for the augmentation of the maxillary sinus floor? Clin Oral Implants Res. 2005;16:349–56.

  14. Molloy T, Wang Y, Murrell G. The roles of growth factors in tendon and ligament healing. Sports Med. 2003;33(5):381–94.

  15. Ranly D, Lohmann C, Andreacchio D, Boyan B, Schwartz Z. Platelet-rich plasma inhibits demineralized bone matrix-induced bone formation in nude mice. J Bone Joint Surg. 2007;89: 139–46.

  16. Eppley B, Woodell J, Higgins J. Platelet Quantification and growth factor analysis from platelet-rich plasma: Implications for wound healing. Plast Reconstr Surg. 2004;114(6):1502–7.

  17. Zehnder JL, Leung LLK. Development of antibodies to thrombin and factor V with recurrent bleeding in a patient exposed to topical bovine thrombim. Blood. 1990;76:2011–6.

  18. Kajikawa Y, Morihara T, Sakamoto H, Matsuda K, Oshima Y, Yoshida A, et al. Platelet-rich plasma enhances the initial mobilization of circulation-derived cells for tendon healing. J Cell Physiol. 2008;215(3):837–45.

  19. Taylor M, Norman T, Clovis N, Blaha D. The response of rabbit patellar tendons after autologous blood injection. Med Sci Sports Exerc. 2002;34(1):70–3.

  20. Berghoff W, Pietrzak W, Rhodes R. Platelet-rich plasma appli­cation during closure following total knee arthroplasty. Orthopedics. 2006;29(7):590–8.

  21. Gardner MJ, Demetrakopoulos D, Klepchick P, Mooar P. The efficacy of autologous platelet gel in pain control and blood loss in total knee arthroplasty: an analysis of the haemoglobin, narcotic requirement and range of motion. Int Orthop. 2006;31:309–13.

  22. Everts P, Devilee R, Mahoney C, Eeftinck-Schattenenkerk M, Knape J, Van Zundert A. Platelet gel and fibrin sealant reduce allogeneic blood transfusions in total knee arthroplasty. Acta Anaesthesiol Scand. 2006;50:593–9.

  23. Crovetti G, Martinelli G, Issi M, Barone M, Guizzardi M, Campanati B, et al. Platelet gel for healing cutaneous chronic wounds. Transfus Apher Sci. 2004;30:145–51.

  24. McAleer JP, Kaplan E, Persich G. Efficacy of concentrated autologous platelet-derived growth factors in chronic lower-extremity wounds. J Am Podiatr Med Assoc. 2006;96(6):482–8.

  25. Ghandi A, Dumas C, O’Connor J, Parsons J, Lin S. The effects of local platelet rich plasma delivery on diabetic bone fracture healing. Bone. 2006;38:540–6.

  26. Beam HA, Parsons JR, Lin SS. The effects of blood glucose control upon fracture healing in the BB Wistar rat with diabetes mellitus. J Orthop Res. 2002;20:1210–6.

  27. Hee HT, Majd ME, Holt RT, Myers L. Do autologous growth factors enhance transforaminal lumbar interbody fusion? Eur Spine J. 2003;12(12):400–7.

  28. Carreon LY, Glassman SD, Anekstein Y, Puno RM. Platelet gel (AGF) fails to increase fusion rates in instrumented posterolateral fusions. Spine. 2005;30(9):E243–6. discussion E247.

  29. Jenis LG, Banco RJ, Kwon B. A prospective study of Autologous Growth Factors (AGF) in lumbar interbody fusion. Spine J. 2006;6(1):14–20.

  30. Castro FP Jr. Role of activated growth factors in lumbar spinal fusions. J Spinal Disord Tech. 2004;17(5):380–4.

  31. Weiner BK, Walker M. Efficacy of autologous growth factors in autologous intertransverse fusions. Spine. 2003;28:1968–70.

  32. Lowery GL, Kulkarni S, Pennisi AE. Use of autologous growth factors in lumbar spine fusion. Bone. 1999;25:47S–50S.

  33. Chen W, Lo WC, Lee JJ, Su CH, Lin CT, Liu HY, et al. Tissue-engineered intervertebral disc and chondrogenesis using human nucleus pulposus regulated through TGF-beta1 in platelet-rich plasma. J Cell Physiol. 2006;209(3):744–54.

  34. Hunziker EB, Driesang IM, Morris EA. Clinical orthopaedics and related research. Chondrogenesis in cartilage repair is induced by members of the transforming growth factor-beta superfamily. Clin Orthop Relat Res. 2001;391(Suppl):S171–81.

  35. Nakagawa K, Sasho T, Arai M, Kitahara S, Ogino S, Wada Y, et al. Effects of autologous platelet-rich plasma on the metabo­lism of human articular chondrocytes. Chiba and Ichihara, Japan. Electronic poster presentation P181. International Cartilage Repair Society Meeting, Warsaw Poland, October 2007.

  36. Kon E, Filardo G, Presti ML, Delcogliano M, Iacono F, Mon-taperto C, et al. Utilization of platelet-derived growth factors for the treatment of cartilage degenerative pathology. Bologna, Italy. Electronic poster presentation 29.3. International Cartilage Repair Society Meeting, Warsaw Poland, October 2007.

  37. Anitua E, Sa´nchez M, Nurden AT, Zalduendo MM, De La Fuente M, Azofra J, et al. Platelet-released growth factors enhance the secretion of hyaluronic acid and induce hepatocyte growth factor production by synovial fibroblasts from arthritic patients. Rheu­matology. 2007;46(12):1769–72.

  38. Wu W, Chen F, Liu Y, Ma Q, Mao T. Autologous injectable tissue-engineered cartilage by using platelet-rich plasma: exper­imental study in a rabbit model. J Oral Maxillofac Surg. 2007;65(10):1951–7.


Возврат к списку

© Copyright 2014